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Cibler la virulence et la pathogénicité
La pathogénicité microbienne est un phénomène multifactoriel. La pathogénicité bactérienne est
définie comme la capacité des bactéries à provoquer des maladies et le degré de pathogénicité est
appelé virulence. Différents facteurs de virulence liés à la fois à la structure (flagelles,
briae, capsule) et les produits de la cellule bactérienne sont connus pour influencer la
énicité de la bactérie. Ces facteurs peuvent être codés par un plasmide ou par un chromosome
[110]. L’interaction entre l’agent pathogène et l’hôte, qui entraîne l’adhérence
l’infection et la colonisation de l’agent pathogène est la première étape du processus d’infection.
La liaison bactérienne au tissu implique deux types principaux d’interaction, le processus
d'adhérence et le taux d'adhérence, qui se produisent par la suite lors de la colonisation
zation. Les mécanismes impliqués dans le processus d’adhérence sont variés et peu
comprendre les interactions de type lectine, les forces électrostatiques et hydrophobes et la surface cellulaire
hydrophobicité. L’hydrophobie de la surface cellulaire est considérée comme un facteur important
médiateur adhérence bactérienne à une grande variété de surfaces [111].
La suppression de la virulence ne tue pas les bactéries. Il pourrait y avoir une synergie
tic lorsqu’il est utilisé avec des traitements antimicrobiens. Balaban et al. [112] enquêté
un nouveau moyen d'interférer avec la synthèse du facteur de virulence en vaccinant des souris avec
un autoinducteur appelé peptide activant RNAIII (RAP). RNAIII est un régulateur
Molécule d’ARN responsable de la synthèse des facteurs de virulence chez S. aureus et
est induite par RAP. La vaccination des souris avec RAP augmente leur résistance à la
S. aureus stimule de 30% à 70% et diminue la taille des lésions. Le règlement
mécanisme de prévention impliquant des autoinducteurs peut être ciblé sur d’autres bactéries.
Les microorganismes pathogènes s'attachent généralement aux tissus cibles en fonction de l'espèce.
mécanismes de récepteur d'adhésion ic. Cependant, l'hydrophobicité à la surface des cellules microbiennes
(CSH) est souvent associé à une liaison au récepteur cellulaire et tissulaire spécifique
de la surface de la muqueuse chez l'hôte infecté [113]. Par conséquent, le nouveau traitement prophylactique
Les apies peuvent impliquer la recherche d’agents contrant les effets des facteurs de virulence,
y compris le caractère hydrophobe des bactéries pathogènes. Au cours des dernières années, des plantes
des parcelles telles que la camomille sauvage et les mauvaises herbes à l'ananas se sont avérées capables de
diminuer la virulence des bactéries en bloquant l'agrégation de Helicobacter pylori.
Les extraits contenaient de petites quantités de tanin et ne révélaient aucun effet antimicrobien.
activité bial. L'acide tannique, un composant d'extraits aqueux de busserole et d'airelle rouge,
a montré une activité plus élevée dans la diminution de CSH ainsi qu'une activité antibactérienne contre
H. pylori [114].
L'influence des extraits aqueux de busserole (feuilles), Saint - Jean ' s wort, sauvage
camomille et souci (fleur) sur l'hydrophobie de 40 E. coli et 20 Aci -
Des souches de netobacter baumanni ont été démontrées [115]. La décoction d'ours
la baie et le millepertuis ont augmenté le caractère hydrophobe de façon remarquable. L'infusion de
la camomille sauvage et le souci ont complètement bloqué les propriétés d’agrégation.
Ces extraits ont montré une activité antimicrobienne faible ou nulle (tableau 9.6).
9.2 Approches du dépistage ciblé contre les bactéries MDR 185
9.2.5
Inhibiteurs de Quorum Sensing
L’interaction entre l’hôte et une bactérie pathogène est principalement contrôlée
par la taille de la population bactérienne. Une cellule bactérienne individuelle est capable de détecter d’autres membres.
membres de la même espèce et à répondre, exprimant de manière différentielle des gènes spécifiques.
186 9 Criblage ciblé d'extraits de plantes et de composés phytotoxiques bioactifs contre des groupes problématiques
Tableau 9.6 Extraits de plantes et composés phytosanitaires influant sur l'hydrophobie de la surface cellulaire
et détection de bactéries par le quorum.
Plantes Extrait actif Organismes Références
Hydrophobicité à la surface des cellules cibles
Andrographis paniculata Extrait brut de Streptococcus mutans 150
Arctostaphylos uva-ursi Extraits aqueux Helicobacter pylori 114
Arnica montana extrait brut Strep. mutans, Strep. sobrinus 151
Camellia sinensis extrait brut Strep. mutans 150
Extraits aqueux de camomille E. coli, A. baumannii 115
Cassia alata Extrait brut Strep. mutans 150
Harrisonia perforata extrait brut Strep. mutans 150
Helichrysum italicum Extraits à l'éthanol Streptococci 152
Juglandaceae regia Aqueux et Strep. mutans 153
extraits alcooliques
Matricaria matricarioides Extraits aqueux Helicobacter pylori 114
Matricaria recutita Extraits aqueux Helicobacter pylori 11
Mikania glomerata Hexane, acétate d'éthyle, streptocoques 154
fraction d'éthanol
Mikania laevigata Hexane, acétate d'éthyle, streptocoques 154
fraction d'éthanol
Extrait de propolis Extrait brut Strep. mutans, Strep. sobrinus 151
Psidium guajava Extrait brut Strep. mutans 150
St. John ' s wort aqueux extrait E. coli, A. baumannii 115
Streblus asper Extrait brut Strep. mutans 150
Tagetes sp. Extraits aqueux de E. coli, A. baumannii 115
Vaccinium vitis-idaea Extraits aqueux Helicobacter pylori 114

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